МЕТОД
Синтез линолевой кислоты, меченной 13С и 14С, для проведения диагностических дыхательных тестов заболеваний гепатобилиарной системы
1 Российский государственный университет физической культуры, спорта, молодежи и туризма, Москва, Россия
2 Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К. И. Скрябина, Москва
3 Институт общей генетики имени Н. И. Вавилова РАН, Москва, Россия
4 Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова, Москва, Россия
5 Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н. Н. Блохина, Москва, Россия
6 Российский экономический университет имени Г. В. Плеханова, Москва, Россия
В настоящее время для диагностики заболеваний печени и билиарной системы требуется разработка простого неинвазивного теста с высокой чувствительностью и специфичностью. Соединения, меченные изотопом углерода, уже имеют широкое применение в диагностике различных заболеваний методами дыхательных тестов, безопасны и способны достоверно выявлять метаболические нарушения или дефицит специфичных ферментов в органах. Целью работы было получить линолевую кислоту, меченную 13С и 14С, по степени очистки пригодную для проведения дыхательных тестов в целях диагностики заболеваний гепатобилиарной системы. В предложенном способе химический выход реакции синтеза 13С-линолевой кислоты по 1-бром-8,11-гептадекадиену составил 86,4%, по 13С-карбонату бария — 96,0%. Химический выход реакции синтеза 14С-линолевой кислоты по 1-бром-8,11-гептадекадиену составил 87,39%, по 14С-карбонату бария — 97,1%. Удельная радиоактивность 14С-линолевой кислоты составила 45,36 ± 0,02 мКи/г. Радиохимический выход реакции — 96,0%. Способ удобен для серийного выпуска готового продукта.
Ключевые слова: дыхательный тест, линолевая кислота, 13С, 14С, гепатобилиарная система, заболевания печени
Вклад авторов: Я. Я. Тыньо — идея, общее руководство; Г. В. Морозова — синтез конечных соединений путем карбоксилирования реактива Гриньяра диоксидом 13С и 14С, материальный баланс всей схемы синтеза; Ю. К. Бирюкова — ЯМР-анализ конечного продукта синтеза; Д. А. Сивохин — обзор литературы, подготовка рукописи к печати; Н. В. Позднякова — обзор литературы; М. В. Зылькова — определение уровня радиоактивности атомов углерода в исходных веществах, полупродуктах синтеза и конечных соединениях; Е. С. Богданова — расшифровка ЯМР-спектра конечных продуктов синтеза; М. С. Смирнова — определение температуры плавления конечного соединения; А. Б. Шевелёв — материально-техническое снабжение работы и обеспечение доступа к оборудованию, редактирование перевода рукописи.
Для корреспонденции: Ярослав Ярославович Тыньо
Сиреневый бульвар, д. 4, г. Москва, 105122;
ur.liam@oinytyy
Численность наблюдаемых пациентов с хроническими заболеваниями печени, приводящими к циррозу (вирусные гепатиты B и C, алкогольные и токсические гепатиты, первичный склерозирующий холангит и др.), непрерывно растет [1].
Биопсия печени остается золотым стандартом оценки состояния органа. Однако инвазивность процедуры и связанные с этим риски осложнений для пациента не позволяют использовать этот метод в качестве рутинного [2]. Внедрение в практику методов неинвазивной диагностики, обладающих высокой достоверностью, простотой выполнения и безопасностью, как для самого пациента, так и для обслуживающего персонала [3], позволит оценивать эффективность лечения в динамике, наличие функциональных резервов печени [2, 4].
Этим функциональные тесты выгодно отличаются от эластографии или расчета лабораторных индексов APRI [5] либо FORNS [6].
Диагностика с помощью дыхательных тестов основана на способности различных органов и систем метаболизировать 13С- и 14С-препараты с образованием 13СО2 [7] или 14СО2 [8], которые распределяются кровеносной системой по всем органам и тканям, и, выделяясь через легкие, могут быть достоверно обнаружены в выдыхаемом воздухе пациента с помощью масс-спектрометрии или ИК-спектрометрии в варианте NDIRS (недиспергирующий инфракрасный анализатор) и лазерной абсорбции CRDS (спектральная техника для измерения поглощения, основанная на определении времени затухания излучения в ячейке с двумя высокоотражающими зеркалами при многократном прохождении света между ними) [:lit_3, 9;]. Таким образом, появляется возможность постановки диагноза на основе анализа фармакокинетических показателей — изменения концентрации 14СО2 в выдыхаемом воздухе во времени и информации о путях и скоростях метаболических превращений препарата [10].
Уже разработаны и внедрены в практику дыхательные тесты для оценки функционального состояния печени на основе оценки скорости метаболизации 13С-метацетина [11–13], 13С-галактозы и 13С-аминофеназона [14] (оценивается активность цитохрома Р450), 13С-фенилаланина [15, 16], 13C-кофеина [17, 18], 13Сз-триоктаноина (тройного эфира глицерина и 13С-каприловой кислоты) для обнаружения дефицита ферментов поджелудочной железы [7, 19].
Одним из наиболее перспективных направлений в ядерной медицине является использование дыхательных тестов на основе различных фармацевтических препаратов с использованием меченых жирных кислот, в частности линолевой. Данное соединение играет существенную роль в энергетическом обмене клеток высших организмов и служит строительным блоком для липидов нескольких классов, таких как нейтральные жиры, фосфоглицериды и эфиры холестерина [20].
Линолевая кислота — длинноцепочечное нерастворимое в воде соединение. В организме под действием желчи, выделяемой из желчного пузыря, в тонком кишечнике происходит гидролиз жирной кислоты с образованием смешанных мицелл. В случае нарушения работы гепатобилиарной системы, приводящего к нехватке желчных солей в желчи, замедляется всасывание меченых жирных кислот, что может быть обнаружено по изотопному составу выделяющегося углекислого газа [20].
В литературе описан стереоспецифический синтез изомеров моно-непредельных жирных кислот с 14С-атомом в первом положении с использованием одиннадцати стадий при помощи инверсии олефина [21]. Преимущество этого способа в возможности получения мононенасыщенных жирных кислот с различным расположением двойной связи. Однако изложенный в работе способ чрезвычайно трудоемок, требует препаративного разделения стереоизомеров по окончании стадии эпоксидирования, а также такого дорогостоящего и токсичного источника 14С, как цианид. Все это ограничивает промышленное применение описанной разработки.
Способы химического синтеза 13С- и 14С-производных наиболее распространенных в пищевых продуктах ненасыщенных жирных кислот: линолевой и линоленовой из наиболее доступного сырья — СО2 на базе изотопов углерода в литературе не описаны. Биологические способы с применением водорослей, простейших и грибов (например, Thraustochytrium или Mortierella alpina) имеют низкий радиохимический выход, не превышающий 60% [22, 23]. Остальную часть изотопа выбрасывают в виде отходов, что с учетом большой длительности распада 14С приводит к высокой экологической опасности схемы синтеза. Кроме того, к недостаткам известного из литературы биологического способа с точки зрения применимости 13С- и 14С-жирных кислот в дыхательных тестах является распределение меченых атомов по всей длине углеродной цепи ацила. Между тем, для достижения максимальной чувствительности, воспроизводимости и безопасности дыхательных тестов целесообразно использовать препараты жирных кислот, имеющих 100% меченого атома в позиции 1 (карбоксильная группа). Часто в результате биогенного синтеза образуется смесь жирных кислот различного состава. Например, показано, что биогенный синтез с использованием Thraustochytrium приводит к образованию 10 различных жирных кислот с выходами 0,72–21,82%. Кроме того, 1,9% изотопа включается в жирные кислоты неидентифицированной структуры [23].
Целью работы было представить способ синтеза линолевой кислоты с помощью 13С и 14С по положению 1 ацила с использованием CO2 в качестве источника аномального изотопа для последующего применения в диагностике гепатобилиарной системы.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Оборудование
Чистоту полученных промежуточных и конечных продуктов контролировали тонкослойной хроматографией на силикагеле на пластинках Kieselgel 60 F254 (Merck; Германия) и sorbfil ПТСХ-АФ-В-УФ, в системе этилацетат: гексан (1 : 1). Визуализацию разделенных соединений проводили с помощью паров йода. Структуру целевого продукта подтверждали спектроскопией ядерного магнитного резонанса на приборах моделей AM-300, 300 МГц (Bruker; Германия) и DRX-500, 500 МГц (Bruker; Германия). В качестве растворителя для проведения анализа методом ЯМР-спектроскопии использовали 2Н-хлороформ, съемку проводили при частоте 300,1 мГц.
Для определения удельной активности меченых атомов углерода использовали жидкостный сцинтилляционный счетчик DPM 7001 (НТЦ Радэк; Россия), оснащенный двумя фотоэлектронными умножителями. Для определения активности смесей использовали микрокалориметр Кальве Setaram С80 (SETARAM Instrumentation; Франция). Значения рН водных растворов определяли потенциометрическим методом с помощью pH-метра модели Sartorius PB-11 (Sartorius; Германия).
Материалы
Использовали следующие материалы:
– 1-бром-8,11-гептадекадиен CH3(CH2)3-(CH2CH=CH)2(CH2)7Br AppliChem (США) со следующими характеристиками: молярная масса — 315,332 г/моль; температура плавления — 23,4 °C; температура кипения — 112 °C [24];
– источник стабильного изотопа углерода: безводный 13С-карбонат бария (АО «Всерегиональное объединение «Изотоп»; Россия), со следующими характеристиками, указанными производителем: изотопная чистота — 99,32%; молекулярная масса — 198,3359 г/моль; температура плавления — 1558 °C;
– источник радиоактивного изотопа углерода: безводный 14С-карбонат бария (ПО «МАЯК» Госкорпорации «РОСАТОМ»; Россия) со следующими характеристиками, указанными производителем: изотопная чистота — 97,8%; молярная масса — 199,3359 г/моль; температура плавления — 1566 °C; удельная радиоактивность — 66,92 мКи/г.
– осушенные аргон и азот квалификации «высокая чистота» («М-газ»; Россия), а также этилацетат по ГОСТ 22300-76 изм.1-3 («Химмед»; Россия), гексан по ТУ 2631- 158-44493179-13 («ЛенРеактив»; Россия), магний (стружка) по ГОСТ 804-93 («Интерхим»; Россия), йод кристаллический чда («ЛенРеактив»; Россия), диэтиловый эфир по ТУ 2600- 001-45682126-13 («Химмед»; Россия), серную кислоту хч по ГОСТ 4204-77 («Химмед»; Россия), соляную кислоту хч по ГОСТ 3118-77 («Химмед»; Россия), гидроксид натрия 98% (Fluka Швейцария; каталожный номер 71695), ацетонитрил по ТУ 6-09-3534-87 («Химсервис»; Россия).
Абсолютированный эфир получали по следующей схеме. Диэтиловый эфир по ТУ 2600-001-45682126-13 промывали насыщенным раствором хлорида кальция из расчета 50 мл на 1 л эфира и сушили над прокаленным в течение суток при +120 °С хлоридом кальция, используя 130 г сухого вещества для обработки 1 л эфира в течение 48 ч. Реагент фильтровали через бумажный складчатый фильтр в сухую колбу и добавляли металлический натрий из расчета 1 г на 1 л. Колбу плотно закрывали пробкой с установленной хлоркальциевой трубкой. Эфир использовали для карбоксилирования реактива Гриньяра при том условии, что при внесении новых порций натрия не наблюдалось выделения водорода.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Получение линолевой кислоты, меченной 13С и 14С в первом положении, проводили в две стадии: 1) получение реактива Гриньяра; 2) карбоксилирование реактива Гриньяра диоксидом 13С и 14С.
Получение реактива Гриньяра
Собирали установку из трехгорлой колбы на 250 мл, в боковые горловины колбы вставляли хорошо действующий обратный холодильник с хлоркальциевой трубкой и капельную воронку с трубкой, уравнивающей давление во время прикапывания эфирного раствора. В центральное отверстие через масляный затвор вводили мешалку с электрическим приводом. В колбу помещали 3,0 г магниевой стружки и кристаллик йода. Всю установку продували током аргона квалификации «высокая чистота» в течение 20 мин. Через капельную воронку в колбу вводили 160 мл абсолютного эфира, включали мешалку и при слабом токе аргона добавляли 3,78 г (12 ммоль) 1-бром- 8,11-гептадекадиена в виде раствора в диэтиловом эфире объемом 80 мл. Для начала реакции колбу нагревали на водяной бане до кипения эфира. После начала реакции водяную баню выключали и процесс перемешивания продолжали до полного растворения магния (рис. 1; разрешения из [25]).
Карбоксилирование реактива Гриньяра диоксидом 13С и 14С
Установка, использованная для получения меченых кислот карбоксилированием реактивом Гриньяра, представляла собой высоковакуумную гребенку, снабженную шлифами для присоединения реакционной колбы, источника СО2 и ртутного манометра, а также трубками для входа и выхода азота. Коническая трехгорлая реакционная колба была изготовлена с таким расчетом, чтобы ее можно было замораживать, и снабжена магнитной мешалкой, позволяющей работать в вакууме при охлаждении (рис. 2; с разрешения из [25]).
Источник диоксида 13С и 14С представлял собой круглодонную колбу, содержащую 5,4 ммоль карбоната бария на базе изотопов: для изотопа 13С — навеска массой 1,071 г, для изотопа 14С — 1,076 г. Колбу соединили с заполненной концентрированной серной кислотой капельной воронкой, снабженной приспособлением для выравнивания давления. Эту часть установки соединили с вакуумной гребенкой через трубку, наполненную осушителем.
Для проведения реакции установку откачали с помощью масляного насоса до давления 0,1 мм рт. ст. и заполнили сухим азотом. Затем, при помощи предварительно промытой и заполненной азотом пипетки с поршневой подачей, быстро ввели в реакционную колбу раствор реактива Гриньяра, полученный из 6 ммоль 1-бром-8,11-гептадекадиена (половина общего полученного количества). Свободный боковой отвод реакционной колбы закрыли пробкой, колбу охладили жидким азотом и откачивали систему до давления 0,1 мм рт. ст. После этого дали содержимому реакционной колбы оттаять, нагревая его смесью сухого льда и ацетона до –77 °С, снова замораживали жидким азотом и опять откачали систему для удаления выделившегося азота.
Карбоксилирование реактива Гриньяра проводили при температуре –20 °С, постоянно перемешивая содержимое колбы. Для запуска выделения СО2 на базе изотопов углерода к карбонату бария из капельной воронки медленно прибавляли концентрированную серную кислоту, при этом следили за тем, чтобы давление в приборе не превышало 500 мм рт. ст. Для полного выделения меченого СO2 в конце реакции осторожно нагревали реакционную колбу с карбонатом бария до окончательного его растворения. После полного истощения реактива Гриньяра давление СO2 в приборе согласно показаниям манометра перестало снижаться. По этому показателю как в случае 13СO2, так и в случае 14СO2, реакция полностью завершилась в течение 15 мин.
Реакционную колбу с реактивом Гриньяра охладили жидким азотом, для того чтобы в нее перешел весь оставшийся в системе меченый СO2, затем закрыли кран, соединяющий прибор с источником меченого СO2, и для полного поглощения меченого СO2 реакционную массу перемешивали в течение 15 мин при температуре –20 °С. После этого установку заполнили азотом и соединили с атмосферой. Полученный комплекс разлагали разбавленной соляной кислотой. Подкисленную смесь экстрагировали эфиром. Эфирный экстракт обработали 100 мМ NaOH и подкислили полученный щелочной раствор до рН 7,0. Выделившуюся кислоту отфильтровали. Осадок собрали, промыли водой и перекристаллизовали из ацетонитрила при –20 °С (считали, что для линолевой кислоты tзамерз = –11 °С).
Масса полученной 13С-линолевой кислоты составила 1459 мг (5,184 ммоль). Итоговый химический выход реакции по 1-бром-8,11-гептадекадиену составил 86,4%, по 13СO2 — 96,0%. Экспериментально измеренная температура замерзания продукта составила –11,0 °С.
Масса полученной 14С-линолевой кислоты составила 1480 мг (5,243 ммоль). Итоговый химический выход реакции по 1-бром-8,11-гептадекадиену составил 87,39%, по 13СO2 — 97,1%. Удельную активность 14С-линолевой кислоты определяли на сцинтилляционном счетчике: она составила 45,36 ± 0,02 мКи/г. Таким образом, общий радиохимический выход составил 96,0%. Препарат имел температуру замерзания –10,7 °С.
Анализ полученных образцов 13С- и 14С-линолевых кислот с помощью тонкослойной хроматографии на платинах Kieselgel 60 F254 в системе этилацетат : гексан (1 : 1) (см. Материалы и методы) позволил обнаружить примеси. Определение массы основного вещества, элюированного из силикагеля после разделения методом ТСХ, показало, что в случае 13С-линолевой кислоты на него приходится 98,2% сухой массы готового препарата.
Сравнение спектра 1H ЯМР 14С-линолевой кислоты с эталонным 1S/C18H32O2/c1-2-3-4-5-6-7-8-9-10-11-12-13- 14-15-16-17-18(19)20/h6-7, 9-10H, 2-5, 8, 11-17H2, 1H3, (H, 19, 20)/b7-6-, 10-9, описанным в литературе [26], показало полное соответствие структуры синтезированного вещества структуре линолевой кислоты (рис. 3).
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
Значимое преимущество предложенного способа синтеза линолевой кислоты, меченной изотопами 13С и 14С, состоит в ускорении процесса получения целевых продуктов, сокращении потерь меченого СО2, в повышении его суммарного химического и радиационного выхода. Важным результатом является также исключение распределения изотопно-меченых атомов по всей длине углеродной цепи ацила: при использовании разработанного метода включение происходит только в первом положении.
Упрощение и снижение стоимости процесса получения целевых продуктов обусловлены уменьшением длительности реакции за счет подбора оптимальных соотношений реагентов и использования теста на окончание реакции карбоксилирования реактива Гриньяра с помощью измерения давления СО2 в системе. Разработанный метод обеспечивает существенное повышение радиационного и химического выхода продукта по источнику изотопа по сравнению с известными способами [21–23]. Включение меченого изотопа в целевой продукт приближается к количественному, в результате практически полностью исключается выброс радиоактивных отходов во внешнюю среду. С учетом затратности и сложности утилизации радиоактивных отходов с длительным периодом полураспада это играет существенную роль с точки зрения экономической эффективности способа.
Полученные в ходе работы образцы 13С- и 14C-линолевой кислот по своей чистоте и количеству пригодны для проведения доклинических испытаний острой, субхронической, хронической и других типов токсичности в соответствии с требованиями [27]. После подтверждения безопасности соединения, изготавливаемые предлагаемым способом, могут быть рекомендованы для испытаний в клинических условиях в качестве диагностических дыхательных тестов в целях диагностики заболеваний гепатобилиарной системы.
ВЫВОДЫ
Предложен метод получения линолевой кислоты, содержащей атомы углерода 13С или 14С в первом положении. От известных аналогов он отличается простотой и включает две вместо 11 стадий. При работе с 14С способ дает радиохимический выход, близкий к количественному (96%), что полностью исключает проблему утилизации опасных радиоактивных отходов, возникающих при работе с 14С-содержащими исходными веществами. Для синтеза кислот предложенным способом не требуется использования сложного аналитического и препаративного оборудования, что удобно для серийного выпуска готового продукта.

- Liou IW. Management of end-stage liver disease. Med Clin North Am. 2014; 98 (1): 119–52. DOI: 10.1016/j.mcna.2013.09.006.
- Musialik J, Jonderko K, Kasicka-Jonderko A, Buschhaus M. 13CO2 breath tests in non-invasive hepatological diagnosis. Prz Gastroenterol. 2015; 10 (1): 1–6.
- Modak AS. Stable isotope breath tests in clinical medicine: A review. J Breath Res. 2007; 1 (1): R1–R13. DOI: 10.1088/1752- 7155/1/1/014003.
- Razlan H, Marzuki NM, Tai M-L S, Shamsul Tze-Zen Ong A-S, Mahadeva S. Diagnostic value of the 13C-methacetin breath test in various stages of chronic liver disease. Gastroenterol Res Pract. 2011; 2011 (1): 1–6. DOI: 10.1155/2011/235796.
- Forns X, Ampurdanès S, Llovet JM, Aponte J, Quintó L, Martínez- Bauer E, et al. Identification of chronic hepatitis C patients without hepatic fibrosis by a simple predictive model. Hepatology, 2002; 36 (4I): 986–92. DOI: 10.1053/jhep.2002.36128.
- Wai CT, Greenson KJ, Fontana RJ, Kalbfleisch JD, Jorge AM, Hari SC, et al. A simple noninvasive index can predict both significant fibrosis and cirrhosis in patients with chronic hepatitis C. Hepatology. 2003; 38 (2): 518–26. DOI: 10.1053/ jhep.2003.50346.
- Эльман А. Р., Рапопорт С. И. Стабильно-изотопная диагностика в России: итоги и перспективы. 13С-препараты, приборы, методы. Клин. мед. 2014; 92 (7): 5–11.
- Balãn H, Gold CA, Dworkin HJ, McCormick VA, Freitas JE. Procedure Guideline for Carbon-14-Urea Breath Test. J Nucl Med. 2016; 39 (11): 2012–14.
- Плавник Р. Г. 13С-Уреазный дыхательный тест на Helicobacter pylori (клинические и организационные аспекты). М.: МЕДПРАКТИКА-М, 2017; 36 с.
- Grattagliano I, Lauterburg BH, Palasciano G, and Portincasa P. 13C-breath tests for clinical investigation of liver mitochondrial function. Eur J Clin Invest. 2010; 40 (9): 843–50. DOI: 10.1111/j.1365-2362.2010.02331.x.
- Gorowska-Kowolik K, Chobot A, and Kwiecien J. 13C-Methacetin Breath Test for Assessment of Microsomal Liver Function: Methodology and Clinical Application. Gastroenterol Res Pract. 2017; 2017 (1): 1–5.
- Moran S, Mina A, Duque X, Ortiz-Olvera N, Rodriguez-Leal G, Sierra-Ramírez JA, et al. The utility of the 13C-methacetin breath test in predicting the long-term survival of patients with decompensated cirrhosis. J Breath Res. 2017; 11 (3): 1–28. DOI: 10.1088/1752- 7163/aa7b99.
- Эльман А. Р., Корнеева Г. А, Носков Ю. Г, Хан В. Н., Шишкина Е. Ю., Негримовски В. М. и др. Синтез продуктов, меченных изотопом 13С, для медицинской диагностики. Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д. И. Менделеева). 2013; LVII (5): 3–24.
- Giannini EG, Alberto F, Paolo B, Federica B, Federica M, et al. 13C-galactose breath test and 13C-aminopyrine breath test for the study of liver function in chronic liver disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 2005; 3 (3): 279–85. DOI: 10.1016/S1542-3565(04)00720-7.
- Moran S, Gallardo-Wong I, Rodriguez-Leal G, McCollough P, Mendez J, Castañeda B, et al. L-[1-13C]phenylalanine breath test in patients with chronic liver disease of different etiologies. Isotopes Environ Health Stud. 2009; 45 (3): 192–7. DOI: 10.1080/10256010903083995.
- Zhang GS, Bao ZJ, Zou J, Yin SM, Huang YQ, Huang H, et al. Clinical research on liver reserve function by 13C-phenylalanine breath test in aged patients with chronic liver diseases. BMC Geriatr. 2010; 10 (23): 1–8 . DOI: 10.1186/1471-2318-10-23.
- Schmilovitz-Weiss H, Niv Y, Pappo O, Halpern M, Sulkes J, Braun M, et al. The 13C-caffeine breath test detects significant fibrosis in patients with nonalcoholic steatohepatitis. J Clin Gastroenterol. 2008; 42 (4): 408–12, 2008. DOI: 10.1097/ MCG.0b013e318046ea65.
- Gordon J, Park H, Wiseman E, George J, Katelaris PH, Seow F, et al. Non-invasive estimation of liver fibrosis in non-alcoholic fatty liver disease using the 13C-caffeine breath test. J Gastroenterol Hepatol. 2011; 26 (9): 1411–6. DOI: 10.1111/j.1440- 1746.2011.06760.x.
- Braden B. 13C breath tests for the assessment of exocrine pancreatic function. Pancreas. 2010; 39 (7): 955–9. DOI: 10.1097/ MPA.0b013e3181dbf330.
- Титов В. Н. Клиническая бихимия жирных кислот, липидов и липопротеинов. Гиполипидемическая терапия и профилактика атеросклероза. Клинико-лабораторный консилиум. 2014; 1: 4–29.
- Georgin D, Taran F, Mioskowski C. A divergent synthesis of [1-14C]-mono-E isomers of fatty acids. Chem Phys Lipids. 2003; 125 (1): 83–91.
- Kawashima H, Akimoto K, Tsuyoshi F, Hideo N, Kyoko K, Sakayu S. Preparation of 13C-labeled polyunsaturated fatty acids by an arachidonic acid-producing fungus Mortierella alpina 1S-4. Analytical Biochemistry. 1995; 229 (2): 317–22. DOI: 10.1006/ abio.1995.1419.
- Zhao X, Qiu X. Analysis of the biosynthetic process of fatty acids in Thraustochytrium. Biochimie. 2018; 144 (1): 108–14.
- Lide DR. CRC Handbook of Chemistry and Physics. 86th ed. CRC Press. 2006; p. 3–320.
- Поздеев В. В., Тыньо Я. Я., Морозова Г. В., Быченко А. Б., Бирюкова Ю. К., Шевелев А. Б., авторы; ООО «ГК Наш Мир», патентообладатель. Способ синтеза линолевой и линоленовой кислот, меченных изотопами углерода 13С и 14С. Патент РФ № 2630691. 12.09.2017.
- Shaaban M, Abd-Alla HI, Hassan AZ, Aly HF, Ghani MA. Chemical characterization, antioxidant and inhibitory effects of some marine sponges against carbohydrate metabolizing enzymes. Org Med Chem Lett. 2012; 2 (1): 30.
- Миронов А. Н. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. М.: Гриф и К, 2012; 994 с.