2021 / 04

Следующая статья
DOI: 10.24075/vrgmu.2021.034

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Применение гистохимических красителей для флуоресцентного выявления амилоидных скоплений в тканях человека

В. В. Гусельникова1,2, Д. А. Суфиева1, Д. Л. Цыба1, Д. Э. Коржевский1
Информация об авторах

1 Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия

2 Санкт-Петербургский государственный университет, Санкт-Петербург, Россия

Для корреспонденции: Валерия Владимировна Гусельникова
ул. Акад. Павлова, д. 12, г. Санкт-Петербург, 197376; ur.xednay@aiirelaV.avocinlesuG

Информация о статье

Вклад авторов: В. В. Гусельникова — анализ литературы, планирование исследования, окраска препаратов, анализ и интерпретация результатов, подготовка черновика рукописи; Д. А. Суфиева — количественный анализ данных; Д. Л. Цыба — количественный анализ данных; Д. Э. Коржевский — разработка концепции, планирование исследования, редактирование рукописи.

Соблюдение этических стандартов: исследование проведено в соответствии с требованиями Хельсинской декларации Всемирной медицинской ассоциации (2013) и одобрено этическим комитетом ФГБНУ «ИЭМ» (протокол № 3/18 от 22 ноября 2018 г.).

Статья получена: 12.07.2021 Статья принята к печати: 25.07.2021 Опубликовано online: 31.07.2021
|
  1. Picken MM. The pathology of amyloidosis in classification: A review. Acta Haematol. 2020; 143 (4): 322–34. DOI: 10.1159/000506696.
  2. Cuddy SAM, Falk RH. Amyloidosis as a systemic disease in context. Can J Cardiol. 2020; 36 (3): 396–407. DOI: 10.1016/j. cjca.2019.12.033.
  3. DeTure MA, Dickson DW. The neuropathological diagnosis of Alzheimer's disease. Mol Neurodegener. 2019; 14 (1): 32. DOI: 10.1186/s13024-019-0333-5.
  4. Dickson DW. Neuropathology of Parkinson disease. Parkinsonism Relat Disord. 2017; 46 (Suppl 1): S30–S33. DOI: 10.1016/j. parkreldis.2017.07.033.
  5. Dapson RW. Amyloid from a histochemical perspective. A review of the structure, properties and types of amyloid, and a proposed staining mechanism for Congo red staining. Biotech Histochem. 2018; 93 (8): 543–56. DOI: 10.1080/10520295.2018.1528385.
  6. Yakupova EI, Bobyleva LG, Vikhlyantsev IM, Bobylev AG. Congo Red and amyloids: history and relationship. Bioscience Reports. 2019; 39 (1): BSR20181415. DOI: 10.1042/BSR20181415.
  7. De Carvalho HF, Taboga SR. The applicability of hematoxylin-eosin staining plus fluorescence or confocal laser scanning microscopy to the study of collagen fibers in cartilages. Coll R Acad Sci III. 1996; 319: 991–6. PMID: 9064122.
  8. Hamid A, Safdar A, Maryam M, Amjad A, Azra J, Abid A. Eosin fluorescence: A diagnostic tool for quantification of liver injury. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2017; 19: 37–44. DOI: 10.1016/j. pdpdt.2017.03.016.
  9. Jakubovsky J, Guller L, Cerna M et al. Fluorescence of hematoxylin and eosin-stained histological sections of the human spleen. Acta Histochem. 2002; 104 (4): 353–6. DOI: 10.1078/0065-1281-00684.
  10. De Rossi A, Rocha LB., Rossi MA. Application of fluorescence microscopy on hematoxylin and eosin-stained sections of healthy and diseased teeth and supporting structures. J Oral Pathol Med. 2007; 36 (6): 377–81. DOI: 10.1111/j.1600-0714.2007.00542.x.
  11. Pihlman K, Linder E. Fluorescence microscopical visualization of elastic fibres using basic fuchsin. Histochemistry. 1983; 79 (2):157–65. DOI: 10.1007/BF00489778.
  12. Sapozhnikov SP, Karyshev PB, Sheptukhina AI, Nikolayeva OV, Avruyskaya AA, Mitrasov YN, Kozlov VA. Novel fluorescent probes for amyloid detection. СТМ. 2017; 9 (2): 91–8. DOI: 10.17691/ stm2017.9.2.11.
  13. Biancalana M, Koide S. Molecular mechanism of Thioflavin-T binding to amyloid fibrils. Biochim Biophys Acta. 2010; 1804 (7): 1405–12. DOI: 10.1016/j.bbapap.2010.04.001.
  14. Sipe JD, Benson MD, Buxbaum JN., Ikeda S-I, Merlini G, Saraiva MJM, Westermark P. Amyloid fibril proteins and amyloidosis: chemical identification and clinical classification International Society of Amyloidosis 2016 Nomenclature Guidelines. Amyloid. 2016; 23 (4): 209–13. DOI: 10.1080/13506129.2016.1257986.
  15. Howie AJ, Mared P O-C. 'Apple-green birefringence' of amyloid stained by Congo red. Kidney Int. 2012; 82 (1): 114. DOI: 10.1038/ki.2012.89.
  16. Cohen AS, Calkins E, Levene CI. Studies on experimental amyloidosis. Analysis of histology and staining reactions of casein-induced amyloidosis in the rabbit. Am J Pathol. 1959; 35: 971–89. PMID: 13810917.
  17. Elghetany MT, Saleem A. Methods for staining amyloid in tissues: a review. Stain Technol. 1988; 63 (4): 201–12. DOI: 10.3109/10520298809107185.
  18. Buchynska L, Kashuba E, Szekely L. Immunofluorescence staining of paraffin sections: creating DAB staining like virtual digital images using CMYK color conversion. Exp Oncol. 2008; 30 (4): 327–9. PMID: 19112433.
  19. Mott RT, Hulette CM. Neuropathology of Alzheimer's disease. Neuroimaging Clin N Am. 2005; 15: 755–65. DOI: 10.1016/j. nic.2005.09.003.
  20. Styren SD, Hamilton RL, Styren GC, Klunk WE. X-34, a fluorescent derivative of Congo red: a novel histochemical stain for Alzheimer's disease pathology. J Histochem Cytochem. 2000; 48 (9): 1223–32. DOI: 10.1177/002215540004800906.