2021 / 05

Следующая статья
DOI: 10.24075/vrgmu.2021.049

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Сходство и различия люцифераз полихет Chaetopterus variopedatus в зависимости от места их обитания

К. В. Пуртов1, В. Н. Петушков1, Н. С. Родионова1, Т. В. Чепурных2, В. Б. Кожемяко3, Р. И. Загитова2, А. С. Щеглов2,4, Р. Х. Зиганшин2, А. С. Царькова2,4
Информация об авторах

1 Институт биофизики, Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской Академии наук

2 Институт биоорганической химии имени академиков М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова, Москва, Россия

3 Тихоокеанский государственный медицинский университет, Владивосток, Россия

4 Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н. И. Пирогова, Москва, Россия

Для корреспонденции: Александр Сергеевич Щеглов
ул. Миклухо-Маклая, д. 16/10, г. Москва, 117997; ur.liam@trakuj

Информация о статье

Благодарности: профессору Андерсону Оливейра и младшему научному сотруднику Джереми Мирза (Океанографический институт Университета Сан-Паулу) за помощь в сборе биомассы бразильских полихет, а также директору Института Мирового океана Дальневосточного федерального университета Кириллу Винникову за консультации по вопросам систематики Chaetopterus.

Вклад авторов: К. В. Пуртов, В. Н. Петушков, Н. С. Родионова — выделение люциферазы; Т. В. Чепурных — выделение ДНК, проведение ПЦР; В. Б. Кожемяко — сбор и подготовка биомассы для выделения люциферазы; Р. И. Загитова, А. С. Щеглов — исследование свойств люцифераз; Р. Х. Зиганшин — масс-спектрометрический анализ; А. С. Царькова — общее руководство проектом.

Статья получена: 28.09.2021 Статья принята к печати: 12.10.2021 Опубликовано online: 26.10.2021
|
  1. Osborn KJ, Rouse GW, Goffredi SK, Robison BH. Description and relationships of Chaetopterus pugaporcinus, an unusual pelagic polychaete (Annelida, Chaetopteridae). Biol Bull. 2007; 212 (1): 40–54. DOI: 10.2307/25066579.
  2. Petersen ME. Chaetopterus variopedatus (Renier) (Annelida: Polychaeta: Chaetopteridae): a species complex. What species are being used at MBL? Biol Bull. 1984; 167: 513.
  3. Petersen ME. Contribution to a revision of Chaetopterus Cuvier (Polychaeta: Chaetopteridae): redescription of C. appendiculatus Grube and C. cautus Marenzeller, with comments on some other species. Bull Mar Sci. 1997; 60: 619.
  4. Bhaud M. The spreading potential of polychaete larvae does not predict adult distributions; consequences for conditions of recruitment. Hydrobiologia. 1998; 375: 35. DOI: 10.1023/A:1017073409259.
  5. Mirza JD, Migotto AE, Yampolsky IV, de Moraes GV, Tsarkova AS, Oliveira AG. Chaetopterus variopedatus bioluminescence: a review of light emission within a species complex. Photochem Photobiol. 2020; 96: 768–78. DOI: 10.1111/php.13221.
  6. Moore JM, Nishi E, Rouse GW. Phylogenetic analyses of Chaetopteridae (Annelida). Zoologica Scripta. 2017; 46 (5); 596– 610. Available from: https://doi.org/10.1111/zsc.12238.
  7. Anctil M. The epithelial luminescent system of Chaetopterus variopedatus. Can J Zool. 1979; 57 (6): 1290–310. DOI: 10.1139/ Z79-166.
  8. Shimomura O, Johnson FH, Haneda Y. Partial purification and properties of the Chaetopterus luminescence system. Bioluminescence in Progress. Princeton University Press; 1966: 495521. Available from: https://doi.org/10.1515/9781400875689031.
  9. Branchini BR, Behney CE, Southworth TL, Rawat R, Deheyn DD. Chemical analysis of the luminous slime secreted by the marine worm Chaetopterus (Annelida, Polychaeta). Photochem Photobiol. 2014; 90 (1): 247–51. DOI: 10.1111/php.12169.
  10. Shimomura O, Johnson FH. Chaetopterus photoprotein: crystallization and cofactor requirements for bioluminescence. Science. 1968; 159 (3820): 1239–40. DOI: 10.1126/ science.159.3820.1239.
  11. Purtov KV, Petushkov VN, Rodionova NS, et al. Luciferin-luciferase system of marine polychaete Chaetopterus variopedatus. Dokl Biochem Biophys. 2019; 486 (1): 209–12. DOI: 10.1134/ S1607672919030104.
  12. Щеглов А. С., Царькова А. С. Перспективы использования биолюминесцентной системы Chaetopterus variopedatus для мониторинга ферроптоза в живых организмах. Вестник РГМУ. 2021; (3): 79–81. DOI: 10.24075/vrgmu.2021.024.
  13. Dixon SJ, Lemberg KM, Lamprecht MR, Skouta R, Zaitsev EM, Gleason CE, et al. Ferroptosis: an iron-dependent form of nonapoptotic cell death. Cell. 2012; 149: 1060–72. DOI: 10.1016/j.cell.2012.03.042.
  14. Li J, Cao F, Yin H-L, Huang Z-J, Lin Z-T, Mao N, et al. Ferroptosis: past, present and future. Cell Death Dis. 2020; 11 (2): 88. DOI: 10.1038/s41419-020-2298-2.
  15. Yan H-F, Zou T, Tuo Q-Z, Xu S, Li H, Belaidi AA, et al. Ferroptosis: mechanisms and links with diseases. Signal Transduct Target Ther. 2021; 6 (1): 49. DOI: 10.1038/s41392-020-00428-9.
  16. Viviani VR, et al. Active-site properties of Phrixotrix railroad worm green and red bioluminescence-eliciting luciferases. J Biochem. 2006; 140 (4): 467–74. DOI: 10.1093/jb/mvj190.
  17. Arnoldi FG, da Silva Neto AJ, Viviani VR. Molecular insights on the evolution of the lateral and head lantern luciferases and bioluminescence colors in mastinocerini railroad-worms (Coleoptera: Phengodidae). Photochem Photobiol Sci. 2010; 9 (1): 87–92. DOI: 10.1039/B9PP00078J.
  18. Nakajim, Y, Ohmiya Y. Bioluminescence assays: multicolor luciferase assay, secreted luciferase assay and imaging luciferase assay. Expert Opin Drug Discov. 2010; 5 (9): 835–49. DOI: 10.1517/17460441.2010.506213.
  19. Syed AJ, Anderson JC. Applications of bioluminescence in biotechnology and beyond. Chem Soc Rev. 2021; 50: 5668–705. DOI: 10.1039/D0CS01492C.
  20. Slavine NV, McColl RW. Semi-automated Image processing for preclinical bioluminescent imaging. J Appl Bioinform Comput Biol. 2015; 4 (1): pii: 114. DOI: 10.4172/2329-9533.1000114.