2024 / 05

DOI: 10.24075/vrgmu.2024.038

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Морфофункциональное состояние криоконсервированных форменных элементов крови при умеренно низких температурах

А. А. Власов1, С. Ф. Андрусенко1, Е. В. Денисова1, А. Б. Эльканова1, А. А. Каданова1, Е. А. Мельченко1, Н. Н. Сокульская1, Д. А. Доменюк2
Информация об авторах

1 Северо-Кавказский федеральный университет, Ставрополь, Россия

2 Ставропольский государственный медицинский университет, Ставрополь, Россия

Для корреспонденции: Александр Александрович Власов
ул. Пушкина, д. 1, г. Ставрополь, 355017, Россия; ur.ufcn@vosalva

Информация о статье

Вклад авторов: А. А. Власов — концепция исследования, проведение и интерпретация результатов; С. Ф. Андрусенко — дизайн исследования, анализ литературы, написание статьи; Е. В. Денисова, А. А. Каданова, Н. Н. Сокульская — сбор информации; А. Б. Эльканова, Е. А. Мельченко — обработка данных; Д. А. Доменюк — редактирование статьи.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом Северо-Кавказского федерального университета (протокол № 002 от 11 июля 2024 г.); все участники подписали добровольное информированное согласие на участие в исследовании.

Статья получена: 17.07.2024 Статья принята к печати: 25.08.2024 Опубликовано online: 17.09.2024
|
  1. Hidi L, Komorowicz E, Kovács GI, Szeberin Z, Garbaisz D, Nikolova N, et al. Cryopreservation moderates the thrombogenicity of arterial allografts during storage. PLoS One. 2021; 16 (7): e0255114. Available from: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0255114.
  2. Bojic S, Murray A, Bentley BL, Spindler R, Pawlik P, Cordeiro JL, et al. Winter is coming: the future of cryopreservation. BMC Biol 19. 2021; 56. Available from: https://doi.org/10.1186/s12915-021-00976-8.
  3. Awan M, Buriak I, Fleck R, Fuller B, Goltsev A, Kerby J, at al. Dimethyl sulfoxide: a central player since the dawn of cryobiology, is efficacy balanced by toxicity? Regenerative medicine. 2020; 15 (3): 1463–91. DOI: 10.2217/rme-2019-0145.
  4. Liu X, Pan Y, Liu F, He Y, Zhu Q, Liu Z, at al. A review of the material characteristics, antifreeze mechanisms, and applications of cryoprotectants (CPAs). Journal of Nanomaterials. 2021; 2021. Available from: doi.org/10.1155/2021/9990709.
  5. Заикина Е. В., Гончарова А. С., Позднякова В. В., Пандова О. В., Пржедецкий Ю. В., Воловик В. Г и др. Обзор современных методов криоконсервации различных видов биологического материала. Современные проблемы науки и образования. 2022; 4. Доступно по ссылке: https://science-education.ru/ru/article/view?id=31790.
  6. Силюкова Ю. Л., Станишевская О. И., Плешанов Н. В., Курочкин А. А. Эффективность использования комбинаций сахаридов в средах для криоконсервации спермы петухов. Сельскохозяйственная биология. 2020; 55 (6): 1148–58. DOI: 10.15389/agrobiology.2020.6.1148rus.
  7. Jahan S, Kaushal R, Pasha R, Pineault N. Current and future perspectives for the cryopreservation of cord blood stem cells. Transfus Med Rev. 2021; 35 (2): 95–102. DOI: 10.1016/j.tmrv.2021.01.003. PMID: 33640254.
  8. Tas RP, Sampaio-Pinto V, Wennekes T, van Laake LW, Voets IK. From the freezer to the clinic: Antifreeze proteins in the preservation of cells, tissues, and organs. 2021; 22 (3): 52162. DOI: 10.15252/embr.202052162. PMID: 33586846; PMCID: PMC7926221.
  9. Whaley D, Damyar K, Witek RP, Mendoza A, Alexander M, Lakey JR. Cryopreservation: an overview of principles and cell-specific considerations. Cell Transplant. 2021; 30: 963689721999617. DOI: 10.1177/0963689721999617. PMID: 33757335; PMCID: PMC7995302.
  10. Li J, Wang H, Wang L, et al. Stabilization effects of saccharides in protein formulations: A review of sucrose, trehalose, cyclodextrins and dextrans. Eur J Pharm Sci. 2024; 192: 106625. DOI: 10.1016/j.ejps.2023.106625. Epub 2023 Nov 2. PMID: 37918545.
  11. Zhong Y, McGrath JK, Gong B. Dipropinonates of sugar alcohols as water-soluble, nontoxic CPAs for DMSO-Free cell cryopreservation. ACS Biomater Sci Eng. 2021; 7 (10): 4757–62. DOI: 10.1021/acsbiomaterials.1c00995. PMID: 34587440.
  12. Широких И. Г., Полежаева Т. В., Широких А. А., Худяков А. Н., Сергушкина М. И., Назарова Я. И. и др. Криозащитные свойства полисахаридсодержащей фракции Hericium erinaceus БП 16. Известия РАН. Серия биологическая. 2020; 1: 5–11. DOI: 10.31857/S0002332920010129.
  13. Olsson C, Swenson J. Structural comparison between sucrose and trehalose in aqueous solution. J Phys Chem B. 2020; 124 (15): 3074–82. DOI: 10.1021/acs.jpcb.9b09701. PMID: 32223195; PMCID: PMC7311057.
  14. Janis BR, Priddy MC, Otto MR, Kopechek JA, Menze MA. Sonoporation enables high-throughput loading of trehalose into red blood cells. Cryobiology. 2021; 98: 73–79. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2020.12.005. PMID: 33359645.
  15. Xu B, Wang Z, Wang R, Song G, Zhang Y, Su R, at al. Metabolomics analysis of buck semen cryopreserved with trehalose. Front Genet. 2022; 13: 938622. DOI: 10.3389/fgene.2022.938622. PMID: 35991557; PMCID: PMC9386307.
  16. Yao J, Shen L, Chen Z, Zhang B, Zhao G. Hydrogel microencapsulation enhances cryopreservation of red blood cells with trehalose. ACS Biomater Sci Eng. 2022; 8 (5): 2066–75. DOI: 10.1021/acsbiomaterials.2c00051. PMID: 35394755.
  17. Murray A, Congdon TR, Tomás RMF, Kilbride P, Gibson MI. Red blood cell cryopreservation with minimal post-thaw lysis enabled by a synergistic combination of a cryoprotecting polyampholyte with DMSO/Trehalose. Biomacromolecules. 2022; 23 (2): 467–77. DOI: 10.1021/acs.biomac.1c00599. PMID: 34097399; PMCID: PMC7612374.
  18. Рябцева С. А., Храмцов А. Г., Будкевич Р. О., Анисимов Г. С., Чукло А. О., Шпак М. А. Физиологические эффекты, механизмы действия и применение лактулозы. Вопросы питания. 2020; 89 (2): 5–20. DOI: 10.24411/0042-8833-2020-10012.
  19. Shpak M, Ryabtseva S, Bratsikhin А. Lactulose effеct on viability of starter cultures. Journal of Hygienic Engineering and Design. 2019; 27: 162–7.
  20. Killer J, Bunešová VN, Modráčková N, Vlková E, Pechar R, Šplíchal I. Lactulose in combination with soybean lecithin has a cryoprotective effect on probiotic taxa of bifidobacteria and Lactobacillaceae. Lett Appl Microbiol. 2023; 76 (2): ovad008. DOI: 10.1093/lambio/ovad008. PMID: 36657381.
  21. Dayal R, Beyls E, Vral A, et al. The micronucleus assay on cryopreserved whole blood. J Vis Exp. 2024; 204. DOI: 10.3791/65855. PMID: 38465937.
  22. Blackwell AD, Garcia AR, Keivanfar RL, et al. A field method for cryopreservation of whole blood from a finger prick for later analysis with flow cytometry. Am J Phys Anthropol. 2021; 174 (4): 670–85. DOI: 10.1002/ajpa.24251. Epub 2021 Feb 17. PMID: 33595836.
  23. Кит О. И., Гненная Н. В., Филиппова С. Ю., Чембарова Т. В., Лысенко И. Б., Новикова И. А. и др. Криоконсервация гемопоэтических стволовых клеток периферической крови в трансплантологии: современное состояние и перспективы. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2023; 22 (11): 3691. DOI: 10.15829/1728-8800-2023-3691. EDN YTCTTM.
  24. Кирьянова Г. Ю., Волкова С. Д., Касьянов А. Д., Гришина Г. В., Голованова И. С., Чечеткин А. В. Криоконсервирование эритроцитов при температурах –40 °С и –80 °С. Вестник международной академии холода. 2017; 1: 72–78. DOI: 10.21047/1606-4313-2017-16-1-72-78.
  25. Исаева Н. В., Минаева Н. В., Утемов С. В., Шерстнев Ф. С., Зорина Н. А., Змеева Ю. С. и др. Жизнеспособность ядросодержащих клеток в лейкоконцентратах на этапах их получения, замораживания и декриоконсервирования. Бюллетень сибирской медицины. 2023; 22 (2): 46–52. Available from: https://doi. org/10.20538/1682-0363-2023-2-46-52.
  26. Ветошкин К. А., Утемов С. В., Шерстнев Ф. С., Князев М. Г., Костяев А. А. Результаты криоконсервирования донорских тромбоцитных концентратов при низких и ультранизких температурах. Трансфузиология. 2015. 2 (16): 22–27.