2025 / 02

Следующая статья
DOI: 10.24075/vrgmu.2025.019
Авторские права: © 2025 принадлежат авторам. Лицензиат: РНИМУ им. Н.И. Пирогова.
Статья размещена в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY).

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Характеристика метастаз-ассоциированных циркулирующих клеток при раке молочной железы: особенности параметров бокового светорассеяния

А. В. Бузенкова1, Е. С. Григорьева1, В. В. Алифанов1, Л. А. Таширева1, О. Е. Савельева3, Е. С. Пудова1, М. В. Завьялова2, Н. В. Чердынцева1, В. М. Перельмутер1
Информация об авторах

1 Научно-исследовательский институт онкологии, Томский национальный исследовательский медицинский центр Российской академии наук, Томск, Россия

2 Сибирский государственный медицинский университет, Томск, Россия

3 Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет, Санкт-Петербург, Россия

Для корреспонденции: Ангелина Владиславовна Бузенкова
пер. Кооперативный, д. 5, г. Томск, 634009, Россия; ur.liam@va_avoknezub

Информация о статье

Финансирование: работа выполнена при финансовой поддержке гранта РНФ № 23-15-00135.

Вклад авторов: А. В. Бузенкова — анализ литературы, анализ данных, получение и статистическая обработка результатов, написание статьи; Е. С. Григорьева — проточная цитометрия, анализ данных, интерпретация результатов, написание статьи; В. В. Алифанов — проточная цитометрия, редактирование статьи; Л. А. Таширева, О. Е. Савельева — обсуждение результатов, редактирование статьи; Е. С. Пудова — проточная цитометрия; М. В. Завьялова — редактирование статьи; Н. В. Чердынцева — планирование, дизайн исследования, обсуждение результатов; В. М. Перельмутер — планирование и руководство исследованием, интерпретация результатов, написание статьи.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом НИИ онкологии Томского НИМЦ (протокол № 8 от 17 июня 2016 г.), проведено в соответствии с федеральными законами Российской Федерации (№ 152, 323 и др.) и Хельсинкской декларацией 1964 г. и всеми последующими дополнениями и изменениями, регламентирующими научные исследования на биоматериале, полученном у людей. Все участники подписали добровольное информированное согласие об участии в исследовании.

Статья получена: 11.03.2025 Статья принята к печати: 26.03.2025 Опубликовано online: 18.04.2025
|
  1. Riethdorf S, Fritsche H, Müller V, Rau T, Schindlbeck C, Rack B, et al. Detection of circulating tumor cells in peripheral blood of patients with metastatic BC: A validation study of the CellSearch system. Clin Cancer Res. 2007; 13 (3): 920–8. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-06-1695. PMID: 17289886.
  2. Vidlarova M, Rehulkova A, Stejskal P, Prokopova A, Slavik H, Hajduch M, et al. Recent Advances in Methods for Circulating Tumor Cell Detection. Int J Mol Sci. 2023; 24 (4): 3902. DOI: 10.3390/ijms24043902. PMID: 36835311.
  3. Fabisiewicz A, Szostakowska-Rodzos M, Zaczek AJ, Grzybowska EA. Circulating Tumor Cells in Early and Advanced Breast Cancer; Biology and Prognostic Value. Int J Mol Sci. 2020; 21 (5): 1671. DOI: 10.3390/ijms21051671. PMID: 32121386.
  4. Tashireva LA, Savelieva OE, Grigoryeva ES, Nikitin YV, Denisov EV, et al. Heterogeneous Manifestations of Epithelial-Mesenchymal Plasticity of Circulating Tumor Cells in Breast Cancer Patients. Int J Mol Sci. 2021; 22 (5): 2504. DOI: 10.3390/ijms22052504. PMID: 33801519.
  5. Savelieva OE, Tashireva LA, Kaigorodova EV, Buzenkova AV, Mukhamedzhanov RKh, Grigoryeva ES, et al. Heterogeneity of Stemlike Circulating Tumor Cells in Invasive Breast Cancer. Int J Mol Sci. 2020; 21 (8): 2780. DOI: 10.3390/ijms21082780. PMID: 32316333.
  6. Xu W, Yuan F. Detection of Circulating Tumor Cells in the Prognostic Significance of Patients with Breast Cancer: A Retrospective Study. J Clin Lab Anal. 2025; 39 (1): e25126. DOI: 10.1002/jcla.25126. PMID: 39692703.
  7. Perelmuter VM, Grigoryeva ES, Savelieva OE, Alifanov VV, Andruhova ES, Zavyalova MV, et al. EpCAM–CD24+ circulating cells associated with poor prognosis in breast cancer patients. Sci Rep. 2024; 14 (1): 12245. DOI: 10.1038/s41598-024-61516-2. EDN: XZHVTO.
  8. Chabot-Richards DS, George TI. White blood cell counts. Clin Lab Med. 2015; 35 (1): 11–24. DOI: 10.1016/j.cll.2014.10.007. PMID: 25676369.
  9. Wu T, Tan JHL, Sin WX, Luah YH, Tan SY, Goh M, et al. Cell granularity reflects immune cell function and enables selection of lymphocytes with superior attributes for immunotherapy. Adv Sci. 2023; 10 (28): e2302175. DOI: 10.1002/advs.202302175. PMID: 37544893.
  10. Watson D, Hagen N, Diver J, Marchand P, Chachisvilis M. Elastic light scattering from single cells: orientational dynamics in optical trap. Biophys J. 2004; 87 (2): 1298–306. DOI: 10.1529/biophysj.104.042135. PMID: 15298932.
  11. Grigoryeva ES, Tashireva LA, Alifanov VV, Savelieva OE, Vtorushin SV, Zavyalova MV, et al. Molecular subtype conversion in CTCs as indicator of treatment adequacy associated with metastasis-free survival in breast cancer. Sci Rep. 2022; 12 (1): 20949. DOI: 10.1038/s41598-022-25609-0. PMID: 36470982.
  12. Sterzynska K, Kempisty B, Zawierucha P, Zabel M. Analysis of the specificity and selectivity of anti-EpCAM antibodies in breast cancer cell lines. Folia Histochem Cytobiol. 2012; 50 (4): 534–41. DOI: 10.5603/17845. PMID: 23264216.
  13. Gorges TM, Tinhofer I, Drosch M, Röse L, Zollner TM, Krahn T, et al. Circulating tumor cells escape from EpCAM-based detection due to epithelial-to-mesenchymal transition. BMC cancer. 2012; 50 (4): 534–41. DOI: 10.1186/1471-2407-12-178. PMID: 22591372.
  14. Königsberg R, Obermayr E, Bises G, Pfeiler G, Gneist M, Wrba F, et al. Detection of EpCAM positive and negative circulating tumor cells in metastatic breast cancer patients. Acta Oncol. 2011; 50 (5): 700–10. DOI: 10.3109/0284186X.2010.549151. PMID: 21261508.
  15. Driemel C, Kremling H, Schumacher S, Will D, Wolters J, Lindenlauf N, et al. Context-dependent adaption of EpCAM expression in early systemic esophageal cancer. Oncogene. 2014; 33 (41): 4904–15. DOI: 10.1038/onc.2013.441. PMID: 24141784.
  16. Перельмутер В. М., Манских В. Н. Прениша как отсутствующее звено концепции метастатических ниш, объясняющее избирательное метастазирование злокачественных опухолей и форму метастатической болезни. Биохимия. 2012; 77 (1): 130–9.
  17. Fox JM, Chamberlain G, Ashton BA. Recent advances into the understanding of mesenchymal stem cell trafficking. Br J Haematol. 2007; 137 (6): 491–502. DOI: 10.1111/j.1365-2141.2007.06610. x. PMID: 17539772.
  18. Huang Y, Chanou A, Kranz G, Pan M, Kohlbauer V, Ettinger A, et al. Membrane-associated epithelial cell adhesion molecule is slowly cleaved by γ-secretase prior to efficient proteasomal degradation of its intracellular domain. JBC. 2019; 294 (9): 3051– 64. DOI: 10.1074/jbc.RA118.005874. PMID: 30598504.
  19. Schreier S & Triampo W. The blood circulating rare cell population. What is it and what is it good for? Cells. 2020; 9 (4): 790. DOI: 10.3390/cells9040790. PMID: 32218149.
  20. Holtorf S, Boyle J, Morris R. Evidence for EpCAM and cytokeratin expressing epithelial cells in normal human and murine blood and bone marrow. JoVE. 2023; (194): 10.3791/65118. DOI: 10.3791/65118. PMCID: PMC10653199.
  21. Kassmer SH & Krause DS. Detection of bone marrow–derived lung epithelial cells. Exp Hematol. 2010; 38 (7): 564–73. DOI: 10.1016/j.exphem.2010.04.011. PMID: 20447442.
  22. Van Arnam JS, Herzog E, Grove J, Bruscia E, Ziegler E, Swenson S. Engraftment of bone marrow-derived epithelial cells. Stem Cell Rev. 2005; 1 (1): 21–7. DOI: 10.1385/SCR:1:1:021. PMID: 17132871.
  23. Borue X, Lee S, Grove J, Herzog EL, Harris R, Diflo T, et al. Bone marrow-derived cells contribute to epithelial engraftment during wound healing. Am J Pathol. 2004; 165 (5): 1767–72. DOI: 10.1016/S0002-9440(10)63431-1. PMID: 15509544.
  24. Solovjov DA, Pluskota E, Plow EF. Distinct roles for the alpha and beta subunits in the functions of integrin alphaMbeta2. JBC. 2005; 280 (2): 1336–45. DOI: 10.1074/jbc.M406968200. PMID: 15485828.
  25. Han C, Jin J, Xu S, Liu H, Li N, Cao X. Integrin CD11b negatively regulates TLR-triggered inflammatory responses by activating Syk and promoting degradation of MyD88 and TRIF via Cbl-b. Nat Immunol. 2010; 11 (8): 734–42. DOI: 10.1038/ni.1908. PMID: 20639876.
  26. Schmid MC, Khan SQ, Kaneda MM, Pathria P, Shepard R, Louis TL, et al. Integrin CD11b activation drives anti-tumor innate immunity. Nat Commun. 2018; 9 (1): 5379. DOI: 10.1038/s41467-018-07387-4. PMID: 30568188.
  27. Lambert C, Preijers FW, Yanikkaya Demirel G, Sack U. Monocytes and macrophages in flow: an ESCCA initiative on advanced analyses of monocyte lineage using flow cytometry. Cytometry B Clin Cytom. 2017; 92 (3): 180–8. DOI: 10.1002/cyto.b.21280. PMID: 26332381.
  28. Johansson J, Tabor V, Wikell A, Jalkanen S, Fuxe J. TGF-β1Induced Epithelial-Mesenchymal Transition Promotes Monocyte/Macrophage Properties in Breast Cancer Cells. Front Oncol. 2015; 5: 3. DOI: 10.3389/fonc.2015.00003. PMID: 25674539.