2026 / 04

Следующая статья
DOI: 10.24075/vrgmu.2026.046
Авторские права: © 2026 принадлежат авторам. Лицензиат: РНИМУ им. Н.И. Пирогова.
Статья размещена в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY).

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Влияние стандартной и фотоактивированной обогащенной тромбоцитами плазмы на фиброхондроциты мениска человека при IL1β-индуцированном воспалении

К. Б. Керимов1 , А. С. Иванов1,2,3 , Т. П. Тананакина3 , С. А. Кащенко3 , И. А. Погорелова3
Информация об авторах

1 Клиника «МЕДСИ», Клиническая больница № 1, Москва, Россия

2 Научно-диагностический центр «Поликлиника на Смоленской», Москва, Россия

3 ФГБОУ ВО ЛГМУ имени Святителя Луки Минздрава России, Россия

Для корреспонденции: Алексей Сергеевич Иванов
ул. А. Дикого, д. 16А, кв. 73, 111396, г. Москва, Россия, ur.liam@5891golotamvartahsas

Информация о статье

Вклад авторов: К. Б. Керимов — дизайн исследования, экспериментальная часть работы, расчеты; А. С. Иванов — дизайн исследования, экспериментальная часть работы; Т. П. Тананакина — дизайн исследования, экспериментальная часть работы, научное сопровождение; С. А. Кащенко — научное редактирование, научное сопровождение, подготовка эксперимента; Погорелова И. А. — техническое редактирование, подготовка эксперимента.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом ФГБОУ ВО ЛГМУ имени Святителя Луки, МЗ РФ (протокол № 2 от 26 мая 2026 г.), полностью соответствует рекомендации Коллегии ЕЭК «Руководство по работе с лабораторными (экспериментальными) животными при проведении доклинических (неклинических) исследований от 14.11.2023 №33», принципам Европейской конвенции о защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях, а также в соответствии с директивой Европейского парламента и совета Европейского союза по охране животных, в научных целях. Все пациенты подписали письменное согласие на использование полученного материала для экспериментальных целей.

Статья получена: 27.06.2026 Статья принята к печати: 20.08.2026 Опубликовано online: 26.08.2026
|
  1. Гладкова Е. В., Иванов А. Н. Взаимосвязь структурных нарушений суставного гиалинового хряща и параметров системных проявлений воспалительной реакции в патогенезе ранних стадий первичного остеоартроза. Саратовский научно-медицинский журнал. 2018; 14 (3): 518–23. Доступно по ссылке: https://cyberleninka.ru/article/n/vzaimosvyaz-strukturnyh-narusheniy-sustavnogo-gialinovogo-hryascha-i-parametrov-sistemnyh-proyavleniy-vospalitelnoy-reaktsii-v (дата обращения: 27.06.2026).
  2. Иванов А. С., Тананакина Т. П., Кащенко С. А., Погорелова И. А. Экспрессия микроРНК miR146a в плазме крови крыс с ожирением и артрозом коленного сустава на фоне введения дексаметазона. Вестник РГМУ. 2025; 6: 223–9. DOI: 10.24075/vrgmu.2025.056.
  3. Плехова Н. Г., Кабалык М. А., Просекова Е. В., Шуматов В. Б. Провоспалительные цитокины, хемокин CXСL17 и белки теплового шока при остеоартрите коленного сустава. Российский иммунологический журнал. 2025; 28 (1): 129–34. DOI: 10.46235/1028-7221-16975-PCC.
  4. Chow YY, Chin KY. The Role of Inflammation in the Pathogenesis of Osteoarthritis. Mediators Inflamm. 2020; 2020: 8293921. DOI: 10.1155/2020/8293921.
  5. McGregor NE, Murat M, Elango J, Poulton IJ, Walker EC, et al. IL6 exhibits both cis- and trans-signaling in osteocytes and osteoblasts, but only trans-signaling promotes bone formation and osteoclastogenesis. J Biol Chem. 2019; 294 (19): 7850–63. DOI: 10.1074/jbc.RA119.008074.
  6. Vadalà G, Di Giacomo G, Ambrosio L, Cannata F, Cicione C, Papalia R, Denaro V. Irisin Recovers Osteoarthritic Chondrocytes In Vitro. Cells. 2020; 9 (6): 1478. DOI: 10.3390/cells9061478.
  7. Li L, Li Z, Li Y, Hu X, Zhang Y, et al. Profiling of inflammatory mediators in the synovial fluid related to pain in knee osteoarthritis. BMC Musculoskelet Disord. 2020; 21 (1): 99. DOI: 10.1186/s12891-020-3120-0.
  8. Федуличев Н. П. Провоспалительные цитокины в патогенезе остеоартрита. Университетская клиника. 2024; 4 (53): 70–81. Доступно по ссылке: https://cyberleninka.ru/article/n/provospalitelnye-tsitokiny-v-patogeneze-osteoartrita (дата обращения: 27.06.2026).
  9. Jaime P, García-Guerrero N, Estella R, Pardo J, GarcíaÁlvarez F, et al. CD56+/CD16- Natural Killer cells expressing the inflammatory protease granzyme are enriched in synovial fluid from patients with osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 2017; 25 (10): 1708– 18. DOI: 10.1016/j.joca.2017.06.007.
  10. Mimpen JY, Carr AJ, Dakin SG, Snelling SJ. Inhibition of interleukin17-induced effects in osteoarthritis — An in vitro study. Osteoarthritis Cartilage. 2018; 26: S118. DOI: 10.1016/j.joca.2018.02.258.
  11. Babaei M, Javadian Y, Narimani H, Ranaei M, Heidari B, et al. Correlation between systemic markers of inflammation and local synovitis in knee osteoarthritis. Caspian J Intern Med. 2019; 10 (4): 383–7. DOI: 10.22088/ cjim.10.4.383.
  12. Snelling SJ, Bas S, Puskas GJ, Dakin SG, Suva D, et al. Presence of IL17 in synovial fluid identifies a potential inflammatory osteoarthritic phenotype. PLoS One. 2017; 12 (4): e0175109. DOI: 10.1371/journal.pone.0175109.
  13. Lee YH, Song GG. Association between IL17 gene polymorphisms and circulating IL17 levels in osteoarthritis: a meta-analysis. Z Rheumatol. 2020; 79 (5): 482–90. DOI: 10.1007/s00393-019-00720-2.
  14. Дыдыкина И. С., Коваленко П. С., Коваленко А. А., Аболешина А. В. Значение неденатурированного коллагена для нормализации функции хрящевой ткани суставов. Медицинский совет. 2022; 16 (14): 145–53. DOI: 10.21518/2079- 701X-2022-16-14-145-153.
  15. Zhang B, Zhang Y, Wu N, Li J, Liu H, Wang J. Integrated analysis of COL2A1 variant data and classification of type II collagenopathies. Clin Genet. 2020; 97: 383–95. DOI: 10.1111/cge.13680.
  16. Mortier GR, Cohn DH, Cormier-Daire V, Hall C, Krakow D, Mundlos S, et al. Nosology and classification of genetic skeletal disorders: 2019 revision. Am J Med Genet A. 2019; 179 (12): 2393–419. DOI: 10.1002/ajmg.a.61366.
  17. Viakhireva I, Bychkov I, Markova T, Shatokhina O, Karandasheva K, Udalova V, Bekhtereva Y, Ryzhkova O, Skoblov M. The molecular complexity of COL2A1 splicing variants and their significance in phenotype severity. Bone. 2024; 181: 117013. DOI: 10.1016/j.bone.2024.117013.
  18. Huan Yu, Sai Yao, Chengchong Zhou, Fangda Fu, Huan Luo, Weibin Du, et al. Morroniside attenuates apoptosis and pyroptosis of chondrocytes and ameliorates osteoarthritic development by inhibiting NF-κB signaling. Journal of Ethnopharmacology. 2021; 266: 113447. DOI: 10.1016/j.jep.2020.113447.
  19. Hussain A, Tarahomi T, Singh L, Bollampally M, Heydari-Kamjani M, Kesselman MM. Cardiovascular Risk Associated with TNF Alpha Inhibitor Use in Patients with Rheumatoid Arthritis. Cureus. 2021; 13 (9): e17938. DOI: 10.7759/cureus.17938.
  20. Абрамова Т. Я., Блинова Е. А., Пашкина Е. А., Гришина Л. В., Ильина Н. А., Чумасова О. А., Сизиков А. Э., Козлов В. А. Исследование эффекторных молекул автономного и неавтономного влияния апоптоза Т-лимфоцитов в условиях «клеточного соседства» в культуре у здоровых людей и пациентов с РА. Медицинская иммунология. 2022; 24 (6): 1119–38. DOI: 10.15789/1563-0625-SOE-2527.
  21. Bagmut IYu, Ivanov OS, Sheremet MI, Smirnov SM, Kolisnyk IL, Ivanova JV, et al. Isolation of megakaryocytes using magnetic cell separation and adverse effects induced by diclofenac toxicity in an experiment. J Med Life. 2022; 15 (1): 65–70. DOI: 10.25122/jml-2020-0129.
  22. Ivanov О, Haidash O, Voloshin V, Kondratov S, Smirnov A. Influence of the acting substance sodium diclofenac on bone marrow cells. Georgian Medical News. 2020; 306: 137–42. PMID: 33130661.
  23. Ivanova YuV, Gramatiuk SM, Kryvoruchko IA, Prasol VO, Pulyaeva IS, Miasoiedov КV, et al. The Effect of pulsed photobiomodulation on proliferation and migration of human mesenchymal stem cells in vitro. Clinical and preventive medicine. 2024; (5): 87–92. DOI: 10.31612/2616-4868.5.2024.11.
  24. Медведев В. Л., Опольский А. М., Коган М. И. Перспективы развития регенеративных технологий. Современные знания об аутоплазме, обогащеннои тромбоцитами и возможности ее применения в лечении урологических заболеваний. Кубанский научный медицинский вестник. 2018; 25 (3): 155– 61. DOI: 10.25207/1608-6228-2018-25-3-155-161.
  25. Irmak G, Gümüşderelioğlu M. Photo-activated platelet-rich plasma (PRP)-based patient-specific bio-ink for cartilage tissue engineering. Biomed Mater. 2020; 15 (6): 065010. DOI: 10.1088/1748-605X/ab9e46.
  26. Gramatiuk S, Kryvoruchko I, Ivanova Y, Emily Hubbard, Maria Noebauer-Babenko, Karine Sargsyan. Artificial Intelligence-Based Quality Control of Cell Lines. Biopreserv Biobank. 2025; DOI: 10.1177/19475535251367317.
  27. Li Y, Wang F, Ji B, Amati A, Cao L. FHL2 deteriorates IL-1β induced inflammation, apoptosis, and extracellular matrix degradation in chondrocyte-like ATDC5 cells by mTOR and NF-ĸB pathways. BMC Musculoskelet Disord. 2025; 26 (1): 331. DOI: 10.1186/s12891-025-08536-9.
  28. Collins T, Alexander D, Barkatali B. Platelet-rich plasma: a narrative review. EFORT Open Rev. 2021; 6 (4): 225–35. DOI: 10.1302/2058-5241.6.200017.
  29. Mishra Kanchan, Desai Pooja, Khanna Manish, Malhotra Sayesha. Photoactivated platelet-rich plasma (PA-PRP): A safe and effective treatment for musculoskeletal disorders. IP International Journal of Orthopaedic Rheumatology. 2025; 11: 71–75. DOI: 10.18231/j.ijor.25218.1765359797.
  30. Bustin SA, Ruijter JM, van den Hoff MJB, Kubista M, Pfaffl MW, Shipley GL, et al. MIQE 2.0: Revision of the Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments Guidelines. Clin Chem. 2025; 71 (6): 634–51. DOI: 10.1093/clinchem/hvaf043.
  31. Videla-Jiménez P, Ruz F, López-Martín M. Research on box plot knowledge in statistical education: a systematic review of the literature. Eur J Psychol Educ. 2025; 40: 141. DOI: 10.1007/s10212-025-01048-z.
  32. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 2001; 25 (4): 402–8. DOI: 10.1006/meth.2001.1262.
  33. Raut RD, Chakraborty AK, Neogi T, Michael Albro, Brian Snyder, Thomas P. Schaer, et al. A multi-tissue human knee single-cell atlas identifies that osteoarthritis reduces regenerative tissue stem cells while increasing inflammatory pain macrophages. Commun Biol. 2025; 8: 1146. DOI: 10.1038/s42003-025-08586-8.
  34. Mocanu V, Timofte DV, Zară-Dănceanu C-M, Labusca L, Obesity. Metabolic Syndrome, and Osteoarthritis Require Integrative Understanding and Management. Biomedicines. 2024; 12: 1262. DOI: 10.3390/biomedicines12061262.
  35. Galicia-Canales BE, del Rocío Aguilar-Gaytán M, Álvarez-Pérez MA, Jarquín-Yáñez K, et al. Effect of peniocerol on human meniscal fibrochondrocyte inflammation induced by IL-1β and TNF-α through the NF-κB signaling pathway. Cellular and Molecular Biology. 2026; 72 (3): 36–44. DOI: 10.14715/cmb/2025.72.3.5.
  36. Rikkers M, Dijkstra K, Terhaard BF, Admiraal J, Levato R, Malda J, et al. Platelet-Rich Plasma Does Not Inhibit Inflammation or Promote Regeneration in Human Osteoarthritic Chondrocytes In Vitro Despite Increased Proliferation. Cartilage. 2021; 13 (2_suppl): 991S–1003S. DOI: 10.1177/1947603520961162.
  37. Zhao H, Zhu W, Mao W, Shen C. Platelet-rich plasma inhibits Adriamycin-induced inflammation via blocking the NF-κB pathway in articular chondrocytes. Mol Med. 2021; 27 (1): 66. DOI: 10.1186/s10020-021-00314-2.
  38. O’Donnell C, Migliore E, Grandi FC, et al. Platelet-Rich Plasma (PRP) From Older Males With Knee Osteoarthritis Depresses Chondrocyte Metabolism and Upregulates Inflammation. J Orthop Res. 2019; 37: 1760–70. DOI: 10.1002/jor.24322.
  39. Li M, Jing C, Liu Q, Zhang Y, Li K. Platelet-rich plasma in cartilage repair: biological mechanisms and clinical perspectives. Front Sports Act Living. 2026; 8: 1785754. DOI: 10.3389/fspor.2026.1785754.