МНЕНИЕ

Перспективы использования биолюминесцентной системы Chaetopterus variopedatus для мониторинга ферроптоза в живых организмах

А. С. Щеглов1,2, А. С. Царькова1,2
Информация об авторах

1 Институт биоорганической химии имени М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова, Москва, Россия

2 Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н. И. Пирогова, Москва, Россия

Для корреспонденции: Александр Сергеевич Щеглов
ул. Миклухо-Маклая, д. 16/10, г. Москва, 117997; ur.liam@trakuj

Информация о статье

Финансирование: исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (проект № 18-74-10102).

Благодарности: авторы признательны Центру высокоточного редактирования и генетических технологий для биомедицины (Москва) за помощь в проведении исследования.

Вклад авторов: А. С. Щеглов — идея публикации, анализ литературы, написание статьи; А. С. Царькова — анализ литературы, написание статьи.

Статья получена: 05.05.2021 Статья принята к печати: 12.05.2021 Опубликовано online: 30.05.2021
|
  1. Tang D, Kang R, Berghe TV, Vandenabeele P, Kroemer G. The molecular machinery of regulated cell death Cell Research 2019, 29: 347–64, DOI: 10.1038/s41422-019-0164-5.
  2. Kerr JF, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. Br J Cancer. 1972; 26 (4): 239–57. DOI: 10.1038/bjc.1972.33.
  3. Dolma S, Lessnick SL, Hahn WC, Stockwell BR. Identification of genotype-selective antitumor agents using synthetic lethal chemical screening in engineered human tumor cells. Cancer Cell. 2003; 3: 285–96. DOI: 10.1016/S1535-6108(03)00050-3.
  4. Yagoda N, von Rechenberg M, Zaganjor E, Bauer AJ., Yang WS, Fridman DJ, et al. RAS-RAF-MEK-dependent oxidative cell death involving voltage-dependent anion channels. Nature. 2007; 447: 864–8. DOI: 10.1038/nature05859.
  5. Yang WS, Stockwell BR. Synthetic lethal screening identifies compounds activating iron-dependent, nonapoptotic cell death in oncogenic-RAS-harboring cancer cells. Chem Biol. 2008; 15: 234–45. DOI: 10.1016/j.chembiol.2008.02.010.
  6. Dixon SJ, Lemberg KM, Lamprecht MR, Skouta R, Zaitsev EM, Gleason CE, et al. Ferroptosis: an iron-dependent form of nonapoptotic cell death. Cell. 2012; 149: 1060–72. DOI: 10.1016/j.cell.2012.03.042.
  7. Angeli JPF, Schneider M, Proneth B, Tyurina YY, Tyurin VA, Hammond VJ, et al. Inactivation of the ferroptosis regulator Gpx4 triggers acute renal failure in mice. Nat Cell Biol. 2014; 16: 1180– 91. DOI: 10.1038/ncb3064.
  8. Li J, Cao F, Yin H-l, Huang Z-j, Lin Z-t, Mao N, et al. Ferroptosis: past, present and future. Cell Death Dis. 2020; 11 (2): 88. DOI: 10.1038/s41419-020-2298-2.
  9. Yan H-F, Zou T, Tuo Q-Z, Xu S, Li H, Belaidi AA, et al. Ferroptosis: mechanisms and links with diseases. Signal Transduct Target Ther. 2021; 6 (1): 49. DOI:10.1038/s41392-020-00428-9.
  10. Syed AJ, Anderson JC. Applications of bioluminescence in biotechnology and beyond. Chem Soc Rev. 2021 Mar 18. DOI: 10.1039/d0cs01492c.
  11. Oba Y, Stevani CV, Oliveira AG, Tsarkova AS, Chepurnykh TV, Yampolsky IV. Selected least studied but not forgotten bioluminescent systems. Photochem Photobiol. 2017; 93 (2): 405–15. DOI: 10.1111/php.12704.
  12. Mirza JD, Migotto ÁE, Yampolsky IV, de Moraes GV, Tsarkova AS, Oliveira AG. Chaetopterus variopedatus bioluminescence: A review of light emission within a species complex. Photochem Photobiol. 2020; 96 (4): 768–78. DOI: 10.1111/php.13221.
  13. Shimomura O, Johnson FH. Chaetopterus photoprotein: crystallization and cofactor requirements for bioluminescence. Science. 1968; 159 (3820): 1239–40. DOI: 10.1126/ science.159.3820.1239.
  14. Purtov KV, Petushkov VN, Rodionova NS, Pakhomova VG, Myasnyanko IN, Myshkina NM, et al. Luciferin-Luciferase system of marine polychaete Chaetopterus variopedatus. Dokl Biochem Biophys. 2019; 486 (1): 209–12. DOI: 10.1134/ S1607672919030104.