2022 / 06

Следующая статья
DOI: 10.24075/vrgmu.2022.070

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Нокаут мутантного ТР53 в клетках линии HaCaT усиливает их миграционную активность

П. М. Кожин, Д. Д. Ромашин, А. Л. Русанов, Н. Г. Лузгина
Информация об авторах

Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. Ореховича, Москва, Россия

Для корреспонденции: Александр Леонидович Русанов
ул. Погодинская, д. 10, стр. 8, г. Москва, 119121, Россия; moc.liamg@vonasur.l.rednaxela

Информация о статье

Финансирование: работа выполнена в рамках Программы фундаментальных научных исследований в Российской Федерации на долгосрочный период (2021 - 2030 годы) № 122022800481-0.

Вклад авторов: Н. Г. Лузгина, А. Л. Русанов ― концепция исследования; Д. Д. Ромашин, П. М. Кожин, Н. Г. Лузгина, А. Л. Русанов ― дизайн исследования и анализ литературы; Д. Д. Ромашин, П. М. Кожин ― планирование и проведение исследования; П. М. Кожин, Д. Д. Ромашин, Н. Г. Лузгина, А. Л. Русанов ― анализ и интерпретация полученных данных; П. М. Кожин, Д. Д. Ромашин ― подготовка текста статьи; П. М. Кожин, Д. Д. Ромашин, Н. Г. Лузгина, А. Л. Русанов ― редактирование рукописи.

Соблюдение этических стандартов: исследование проведено в соответствии с принципами Хельсинкской декларации Всемирной Медицинской ассоциации и всех ее пересмотров.

Статья получена: 12.12.2022 Статья принята к печати: 24.12.2022 Опубликовано online: 30.12.2022
|
  1. Petushkova NA, Rusanov AL, Pyatnitskiy MA, et al. Proteomic characterization of HaCaT keratinocytes provides new insights into changes associated with SDS exposure. Biomed Dermatol. 2020; 4 (1): 4. DOI:10.1186/s41702-019-0054-y.
  2. Rusanov AL, Nakhod KV, Nakhod VI, Poverennaya EV, Petushkova NA, Luzgina NG. Changes in the Proteome of HaCaT Keratinocytes Induced by Cytotoxic Substance Triton X-100. Bull Exp Biol Med. 2017; 163 (5): 620–22. DOI: 10.1007/s10517-017- 3863-2.
  3. Smits JPH, Niehues H, Rikken G, et al. Immortalized N/TERT keratinocytes as an alternative cell source in 3D human epidermal models. Sci Rep. 2017; 7 (1): 11838. DOI: 10.1038/s41598-017- 12041-y.
  4. Lehman TA, Modali R, Boukamp P, et al. p53 mutations in human immortalized epithelial cell lines. Carcinogenesis. 1993; 14 (5): 833–9. DOI: 10.1093/carcin/14.5.833.
  5. Martynova E, Pozzi S, Basile V, et al. Gain-of-function p53 mutants have widespread genomic locations partially overlapping with p63. Oncotarget. 2012; 3 (2): 132–43. DOI: 10.18632/ oncotarget.447.
  6. Xu J, Reumers J, Couceiro JR, et al. Gain of function of mutant p53 by coaggregation with multiple tumor suppressors. Nat Chem Biol. 2011; 7 (5): 285–95. DOI: 10.1038/nchembio.546.
  7. Cordani N, Pozzi S, Martynova E, et al. Mutant p53 subverts p63 control over KLF4 expression in keratinocytes. Oncogene. 2011; 30 (8): 922–32. DOI: 10.1038/onc.2010.474.
  8. Neilsen PM, Noll JE, Suetani RJ, et al. Mutant p53 uses p63 as a molecular chaperone to alter gene expression and induce a pro-invasive secretome. Oncotarget. 2011; 2 (12): 1203–17. DOI: 10.18632/oncotarget.382.
  9. Русанов А. Л., Кожин П. М., Ромашин Д. Д., Карагяур М. Н., Лузгина Н. Г. Влияние модуляции активности р53 на взаимодействие членов семейства р53 в процессе дифференцировки кератиноцитов линии НаСаТ. Вестник РГМУ. 2020; (6): 60–67. DOI: 10.24075/vrgmu.2020.082.
  10. Goh AM, Coffill CR, Lane DP. The role of mutant p53 in human cancer. J Pathol. 2011; 223 (2): 116–26. DOI: 10.1002/path.2784.
  11. Muller PAJ, Vousden KH, Norman JC. p53 and its mutants in tumor cell migration and invasion. J Cell Biol. 2011; 192 (2): 209. DOI: 10.1083/jcb.201009059.
  12. van der Walt S, Schönberger JL, Nunez-Iglesias J, et al. scikit-image: image processing in Python. PeerJ. 2014; 2: e453. DOI: 10.7717/peerj.453.
  13. Rusanov AL, Romashin DD, Kozhin PM, et al. Impact of p53 Knockout on Protein Data Set of HaCaT Cells in Confluent and Subconfluent Conditions. Data. 2022; 7 (3). DOI: 10.3390/ data7030027.
  14. Wickham H, Averick M, Bryan J, et al. Welcome to the Tidyverse. J Open Source Softw. 2019; 4: 1686. DOI: 10.21105/joss.01686.
  15. Rusanov AL, Luzgina ED, Vakhrushev IV, Nakhod KV, Luzgina NG. A Cell Model of Human Small Intestinal Wall Based on Genetically Modified Caco-2 Cells. Bull Exp Biol Med. 2018; 166 (1): 174–7. DOI: 10.1007/s10517-018-4308-2.
  16. Sprenger A, Weber S, Zarai M, et al. Consistency of the proteome in primary human keratinocytes with respect to gender, age, and skin localization. Mol Cell Proteomics MCP. 2013; 12 (9): 2509– 21. DOI: 10.1074/mcp.M112.025478.
  17. Rousselle P, Beck K. Laminin 332 processing impacts cellular behavior. Cell Adhes Migr. 2013; 7 (1): 122–34. DOI: 10.4161/cam.23132.
  18. Natsumi A, Sugawara K, Yasumizu M, et al. Re-investigating the Basement Membrane Zone of Psoriatic Epidermal Lesions: Is Laminin-511 a New Player in Psoriasis Pathogenesis? J Histochem Cytochem. 2018; 66 (12): 847–62. DOI: 10.1369/0022155418782693.
  19. Huang C, Chen J. Laminin-332 mediates proliferation, apoptosis, invasion, migration and epithelial-to-mesenchymal transition in pancreatic ductal adenocarcinoma. Mol Med Rep. 2021; 23 (1): 11. DOI: 10.3892/mmr.2020.11649.