Авторские права: © 2024 принадлежат авторам. Лицензиат: РНИМУ им. Н.И. Пирогова.
Статья размещена в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY).

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Оценка влияния хронического радиационного воздействия на потерю теломерных участков хромосом в Т-лимфоцитах у женщин

Информация об авторах

Уральский научно-практический центр радиационной медицины, Челябинск, Россия

Для корреспонденции: Яна Владимировна Кривощапова
ул. Воровского, д. 68А, г. Челябинск, 454141, Россия; ur.liam@oh_anaY

Информация о статье

Финансирование: государственное задание ФМБА РФ на выполнение прикладной научно-исследовательской работы по теме «Отдаленные цитогенетические эффекты хронического облучения у жителей Южного Урала».

Благодарности: автор выражает благодарность и. о. заведующей лаборатории радиационной генетики Ю. Р. Ахмадуллиной за ценные замечания.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом УНПЦ РМ ФМБА России (протокол № 8 от 19 июня 2024 г.). У лиц, участвующих в цитогенетических исследованиях, было получено информированное согласие на забор образцов крови и на дальнейшее обследование. Все бланки и анкеты хранятся в лаборатории радиационной генетики УНПЦ РМ.

Статья получена: 16.10.2024 Статья принята к печати: 13.11.2024 Опубликовано online: 13.12.2024
|
  1. Аклеев А. В., редактор. Последствия радиоактивного загрязнения реки Теча. Челябинск: Книга, 2016; 400 с.
  2. Akhmadullina Y. The Composition of Micronuclei in T-Lymphocytes in Women Affected by Chronic Radiation Exposure. Biology Bulletin. 2023; 50: 2986–96.
  3. Shim G, Ricoul M, Hempel WM, et al. Crosstalk between telomere maintenance and radiation effects: A key player in the process of radiation-induced carcinogenesis. Mutation Research/Reviews in Mutation Research. 2014; 760: 1–17.
  4. Льюин Б. Гены. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2011; 896 с.
  5. Возилова А. В., Кривощапова Я. В. Исследование частоты инверсий и комплексных транслокаций в Т-лимфоцитах у облученных жителей Южного Урала. Радиационная биология. Радиоэкология. 2022; 62 (4): 408–15.
  6. Кривощапова Я. В. Влияние хронического облучения на теломерные участки хромосом Т-лимфоцитов периферической крови человека. Медицинская генетика. 2022; 21 (11): 40–43.
  7. Muraki K, Nyhan K, Han L, et al. Mechanisms of telomere loss and their consequences for chromosome instability. Front Oncol. 2012; 2: 135.
  8. Gisselsson D, Jonson T, Petersen A, et al. Telomere dysfunction triggers extensive DNA fragmentation and evolution of complex chromosome abnormalities in human malignant tumors. Proc Natl Acad Sci USA. 2001; 98: 12683–8.
  9. Nakamura AJ, Redon CE, Bonner WM. Telomere-dependent and telomereindependent origins of endogenous DNA damage in tumor cells. Aging. 2009; 1: 212–8.
  10. Mefford HC, Trask BJ. The complex structure and dynamic evolution of human subtelomeres. Nat Rev Genet. 2002; 3: 91–102.
  11. M’kacher R, Colicchio B, Marquet V. Telomere aberrations, including telomere loss, doublets, and extreme shortening, are increased in patients with infertility. Fertility and Sterility. 2021; 115 (1): 164–73.
  12. Coluzzi E, Colamartino M, Cozzi R, et al. Oxidative stress induces persistent telomeric DNA damage responsible for nuclear morphology change in mammalian cells. PLoS One. 2014; 9 (10): e110963. DOI: 10.1371/journal.pone.0110963. PMID: 25354277; PMCID: PMC4212976.
  13. Мармий Н., Моргунова Г., Есипов Д., и др. 8-Оксо-2'-дезоксигуанозин: биомаркер клеточного старения и окислительного стресса или потенциальное лекарство против возрастных болезней? Клиническая геронтология. 2016; 22 (9–10): 46–47.
  14. Petersen S, Saretzki G, Von Zglinicki T. Preferential accumulation of single-stranded regions in telomeres of human fibroblasts. Exp Cell Res. 1998; 239: 152–60.
  15. von Zglinicki T. Oxidative stress shortens telomeres. Trends Biochem. 2002; 27: 339–44.
  16. Li JS, Miralles Fusté J, Simavorian T, et al. TZAP: A telomere-associated protein involved in telomere length control. Science. 2017; 10: 355 (6325): 638–41.
  17. Shishkina EA, Napier BA, Preston DL, Degteva MO Dose estimates and their uncertainties for use in epidemiological studies of radiation-exposed populations in the Russian Southern Urals. PLoS ONE. 2023; 18 (8): e0288479. Available from: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0288479.
  18. IAEA. Cytogenetic dosimetry: applications in preparedness for and response to radiation emergencies. Vienna, Austria: IAEA. 2011; 229.
  19. Nielsen PE, Egholm M, Berg RH, Buchardt O. Sequence-selective recognition of DNA by strand displacement with a thyminesubstituted polyamide. Sci. 1991; 254 (5037): 1497–500.
  20. Ахмадуллина Ю. Р., Возилова А. В., Кривощапова Я. В. Влияние хронического облучения на показатели цитогенетических маркеров старения у жителей прибрежных сел реки Теча. Медицина экстремальных ситуаций. 2024; (2): 56–66. DOI: 10.47183/mes.2024.018.
  21. Hoffmann AA, Rieseberg LH. Revisiting the impact of inversions in evolution: from population genetic markers to drivers of adaptive shifts and speciation. Annu Rev Ecol Evol Syst. 2008; 39: 21–42.
  22. Eidelman YA, Salnikov IV, Slanina SV, Andreev SG. Chromosome folding promotes intrachromosomal aberrations under radiation- and nuclease-induced DNA breakage. Int J Mol Sci. 2021; 22 (22): 12186. DOI: 10.3390/ijms222212186.
  23. Jullien L, Mestre M, Roux P, Gire V. Eroded human telomeres are more prone to remain uncapped and to trigger a G2 checkpoint response. Nucleic Acids Res. 2013; 41 (2): 900–11.
  24. Возилова А. В. Оценка влияния хронического облучения на преждевременное старение Т-лимфоцитов человека на основе нестабильных хромосомных аберраций. Медицина экстремальных ситуаций. 2023; 2: 85–90. DOI: 10.47183/mes.2023.015.