Авторские права: © 2025 принадлежат авторам. Лицензиат: РНИМУ им. Н.И. Пирогова.
Статья размещена в открытом доступе и распространяется на условиях лицензии Creative Commons Attribution (CC BY).

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Экспрессия эктонуклеотидаз CD39 и CD73 в крови больных разными формами метаболически ассоциированной жировой болезни печени

Информация об авторах

1 Институт биологии, Карельский научный центр Российской академии наук, Петрозаводск, Россия

2 Петрозаводский государственный университет, Петрозаводск, Россия

Для корреспонденции: Галина Анатольевна Жулай
ул. Пушкинская, д. 11, г. Петрозаводск, Республика Карелия, Россия; ur.xednay@111-ilaghz

Информация о статье

Финансирование: работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда (грант № 25-25-00534) на научном оборудовании ЦКП КарНЦ РАН.

Вклад авторов: Г. А Жулай, И. В. Курбатова — планирование работы, сбор, обработка и анализ материала, статистическая обработка, написание текста; О. П. Дуданова — формирование клинических групп, анализ клинических данных, редактирование текста.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом Министерства здравоохранения Республики Карелия и Петрозаводского государственного университета (протокол № 48 от 10 марта 2023 г.). От участников исследования получено добровольное информированное согласие и согласие на обработку данных.

Статья получена: 11.11.2025 Статья принята к печати: 12.12.2025 Опубликовано online: 21.12.2025
|
  1. Younossi ZM, Golabi P, Paik JM, Henry A, Van Dongen C, Henry L. The global epidemiology of nonalcoholic fatty liver disease (NAFLD) and nonalcoholic steatohepatitis (NASH): a systematic review. Hepatology. 2023; 77 (4): 1335–47. DOI: 10.1097/HEP.0000000000000004.
  2. Маев И. В., Андреев Д. Н., Кучерявый Ю. А. Распространенность неалкогольной жировой болезни печени в России: метаанализ. Consilium Medicum. 2023; 25 (5): 313–9. DOI: 10.26442/20751753.2023.5.202155.
  3. Ивашкин В. Т., Драпкина О. М., Маевская М. В., Райхельсон К. Л., Оковитый С. В., Жаркова М. С. и др. Клинические рекомендации Российского общества по изучению печени, Российской гастроэнтерологической ассоциации, Российского общества профилактики неинфекционных заболеваний, Российской ассоциации эндокринологов, Российского научного медицинского общества терапевтов, Национального общества профилактической кардиологии, Российской ассоциации геронтологов и гериатров по неалкогольной жировой болезни печени. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2025; 35 (1): 94–152. DOI: 10.22416/1382-4376-2025-35-1-94-152.
  4. Loomba R, Friedman SL, Shulman GI. Mechanisms and disease consequences of nonalcoholic fatty liver disease. Cell. 2021; 184 (10): 2537–64. DOI: 10.1016/j.cell.2021.04.015.
  5. Di Mauro S, Scamporrino A, Filippello A, Di Pino A, Scicali R, Malaguarnera R, et al. Clinical and molecular biomarkers for diagnosis and staging of NAFLD. Int J Mol Sci. 2021; 22 (21): 11905. DOI: 10.3390/ijms222111905.
  6. Peiseler M, Schwabe R, Hampe J, Kubes P, Heikenwälder M, Tacke F. Immune mechanisms linking metabolic injury to inflammation and fibrosis in fatty liver disease — novel insights into cellular communication circuits. J Hepatol. 2022; 77 (4): 1136–60. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.06.012.
  7. Kurbatova IV, Topchieva LV, Dudanova OP, Shipovskaya AA. The role of the soluble interleukin-6 receptor in the progression of nonalcoholic fatty liver disease. Bull Exp Biol Med. 2023; 174 (5): 628–33. DOI: 10.1007/s10517-023-05759-5.
  8. Topchieva LV, Kurbatova IV, Dudanova OP, Vasileva AV, Zhulai GA. Immune cell balance as potential biomarker of progressing non-alcoholic fatty liver disease. Genes & Cells. 2024; 19 (1): 105–25. DOI: 10.17816/gc610252.
  9. Shipovskaya AA, Dudanova OP, Kurbatova IV. Inflammatory cytokines, soluble interleukin-6 receptors, and fragmented cytokeratin-18 as indicators of non-alcoholic steatohepatitis. Ter Arkh. 2025; 97 (2): 115–20. DOI: 10.26442/00403660.2025.02.203123.
  10. Eguchi A, Iwasa M, Yamada M, Tamai Y, Shigefuku R, Hasegawa H, et al. A new detection system for serum fragmented cytokeratin 18 as biomarker reflecting histological activities of human nonalcoholic steatohepatitis. Hepatol Commun. 2022; 6 (8): 1987–99. DOI: 10.1002/hep4.1971.
  11. Pasquini S, Contri C, Borea PA, Vincenzi F, Varani K. Adenosine and Inflammation: Here, There and Everywhere. Int J Mol Sci. 2021; 22: 7685. DOI: 10.3390/ijms22147685.
  12. Jain S, Jacobson KA. Purinergic signaling in liver pathophysiology. Front Endocrinol (Lausanne). 2021; 12: 718429. DOI: 10.3389/fendo.2021.718429.
  13. Snider NT, Griggs NW, Singla A, Moons DS, Weerasinghe SV, Lok AS, et al. CD73 (ecto-5'-nucleotidase) hepatocyte levels differ across mouse strains and contribute to mallory-denk body formation. Hepatology. 2013; 58 (5): 1790–800. DOI: 10.1002/hep.26525.
  14. Wang S, Gao S, Zhou D, Qian X, Luan J, Lv X. The role of the CD39-CD73-adenosine pathway in liver disease. J Cell Physiol. 2021; 236 (2): 851–62. DOI: 10.1002/jcp.29932.
  15. Sun X, Imai M, Nowak-Machen M, Guckelberger O, Enjyoji K, Wu Y, et al. Liver damage and systemic inflammatory responses are exacerbated by the genetic deletion of CD39 in total hepatic ischemia. Purinergic Signal. 2011; 7 (4): 427–34. DOI: 10.1007/s11302-011-9239-6.
  16. Peng ZW, Rothweiler S, Wei G, Ikenaga N, Liu SB, Sverdlov DY, et al. The ectonucleotidase ENTPD1/CD39 limits biliary injury and fibrosis in mouse models of sclerosing cholangitis. Hepatol Commun. 2017; 1 (9): 957–72. DOI: 10.1002/hep4.1084.
  17. Cai Y, Li H, Liu M, Qian X, Luan J, Lv, X. Disruption of adenosine 2A receptor exacerbates NAFLD through increasing inflammatory responses and SREBP1c activity. Hepatology. 2018; 68 (1): 48– 61. DOI:10.1002/jcp.29932.
  18. Brunt EM, Janney CG, Di Bisceglie AM, Neuschwander-Tetri BA, Bacon BR. Nonalcoholic steatohepatitis: a proposal for grading and staging the histological lesions. Am J Gastroenterol. 1999; 94 (9): 2467–74. DOI: 10.1111/j.1572-0241.1999.01377.x.
  19. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using Real-Time quantitative PCR and the 2–∆∆CT method. Methods. 2001. 25 (4): 402–8. DOI: 10.1006/meth.2001.1262.
  20. Timperi E, Barnaba V. CD39 Regulation and Functions in T Cells. International Journal of Molecular Sciences. 2021; 22 (15): 8068. DOI: 10.3390/ijms22158068.
  21. Pulte ED, Broekman MJ, Olson KE, Drosopoulos JH, Kizer JR, Islam N, et al. CD39/NTPDase-1 activity and expression in normal leukocytes. Thrombosis research. 2007; 121 (3): 309–17. DOI: 10.1016/j.thromres.2007.04.008.
  22. Vuerich M, Robson SC, Longhi MS. Ectonucleotidases in intestinal and hepatic inflammation. Front Immunol. 2019; 10: 507. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00507.
  23. Li H, Ding P, Nan Y, Wu Z, Hua N, Luo L, et al. Low expression of CD39 on monocytes predicts poor survival in sepsis patients. J intensive care. 2025; 13: 12. DOI: 10.1186/s40560-025-00784-0.
  24. Duarte MM, Loro VL, Rocha JB, Leal DB, Bem AF, Dorneles A, et al. Enzymes that hydrolyze adenine nucleotides of patients with hypercholesterolemia and inflammatory processes. FEBS J. 2007; 274 (11): 2707–14. DOI: 10.1111/j.1742-4658.2007.05805.x.
  25. Papanikolaou A, Papafotika A, Murphy C, Papamarcaki T, Tsolas O, Drab M, et al. Cholesterol-dependent lipid assemblies regulate the activity of the ecto-nucleotidase CD39. J Biol Chem. 2005; 280 (28): 26406–14. DOI: 10.1074/jbc.M41392720014.